quinta-feira, 28 de maio de 2009

Xilitol, açúcar no combate a cáries

O xilitol é um açúcar álcool (pentitol), naturalmente encontrado em frutas, como morango e amora, levemente adocicado e que apresenta 40% menos calorias que o açúcar refinado.É também produzido em pequena quantidade pelo corpo humano ( 5 a 15 g/dia). É tão doce quanto o açúcar, pois possui a mesma capacidade adoçante, sem provocar cáries. É produzido industrialmente a partir de fontes celulósicas como casca de árvores entre outros, obtendo-se como resultado um produto idêntico ao açúcar, porém, como é metabolizado independentemente da insulina, pode ser consumido sem restrições por diabéticos. Está disponível há mais de 20 anos no mercado da Europa e Escandinávia onde é empregado em uma variedade de produtos como alimentos, cosméticos e fármacos.
O XILITOL reduz a quantidade de placa dentária diminuindo a concentração de Strep. mutans e promove um balanço reduzindo a proporção de polissacarídeos insolúveis e aumentando a dos solúveis. Como resultado, ocorre uma placa menos aderente, de fácil remoção pela escovação habitual dos dentes.

Flúor e sua ação no tecido ósseo (linha de pesquisa)

Entre os tecido de vertebrados o osso é o único que apresenta a característica de reparar-se com formação de novo osso, com tecido semelhante ao original.
Os osteoblastos são as células responsáveis pela síntese dos constituintes orgânicos (fibras colágenas e proteínas não-colagênicas) e pela mineralização da matriz osteóide do tecido ósseo e A atividade de reabsorção é mediada pelos osteoclastos.
A formação e a reabsorção óssea são eventos dinâmicos, dependentes da ação de alguns moduladores como: hormônios, fatores de crescimento, citocinas, metaloproteinases de matriz (MMPs), fosfatases alcalina e fosfatase ácida resistente ao tartarato (TRAP), entre outros, e podem ser influenciados por alguns agentes, entre os quais destaca-se o flúor.
O flúor parece alterar a atividade de osteoblastos; alterar a quantidade de massa óssea em ratos de maneira dose-dependente; além de ser usado em protocolos de tratamentos de osteoporose mostrando diminuir a incidência de fraturas ósseas e aumentar a densidade de massa óssea em humano
Encontra-se em estudo os mecanismos pelos quais o flúor atua sobre os osteoblastos e osteoclastos e também o real efeito de sua administração como tratamento auxiliar da osteoporose.

sexta-feira, 22 de maio de 2009

Utilidades

Bom Dia!!!

Os laboratórios pertencentes ao Departamento de Ciências Biológicas da Faculdade de Odontologia de Bauru possuem alguns equipamentos que podem ser úteis à sua pesquisa. Fizemos uma lista dos equipamentos disponíveis. Lembramos que para utiliza-los é necessário a autorização dos responsáveis pelo laboratório.

Bioquímica


  • Rugosímetro: Avaliação do desgaste em um espécime (ex. um bloco de esmalte dentário após desgaste).



  • Eletrodo íon específico para Flúor: Leitura de flúor em solução.


  • Spectometro de massa: Fornece a quantidade específica de um elemento químico em uma solução.


  • Microdurômetro: Avaliação da dureza de um espécime.

  • Politriz: Polimento de espécimes.


  • Cortadeira: Corte de dentes.

  • Leitor de Microplaca: Análise da quantidade de um elemento químico em uma solução, através da cor.




  • Termociclador: Análise de PCR.

Microbiologia

  • Câmara de Fluxo Laminar: Manipulação de bactérias.


  • Freezer a -80ºC: Congela as amostras.
  • Centrífuga Refrigerada: Centrifuga as amostras mantendo a temperatura baixa.



  • Microscópio invertido: Verifica culturas de células. Equipamento ligado ao computador.



  • Câmara de CO2: Cultura de células.

  • ELISA
  • Citômetro: conta, examina e classifica partículas microscópicas suspensas em meio líquido em fluxo
Patologia
  • Micrótomo: Corte de blocos para confecção de lâminas histológicas.

  • Inclusor de Parafina


  • Histotécnica

Histologia
  • Micrótomo

  • Microscópio com câmera acoplada

  • Microscópio KS300 sistema de imagem digital: Sistema de análise digital (morfometria)


  • Leitor de PCR em tempo real

Anatomia

  • Microscópio com câmera acoplada 12megapixels refrigerada

  • Criostato: Corte histológico congelado

  • Freezer a -80ºC


  • Lupa Cirúrgica

Farmacologia

  • Agitador de Tubos

  • Analgesímetro

sábado, 16 de maio de 2009

Modelo de hipertensão arterial: ratos 1R-1C

No Laboratório de Farmacologia do Departamento de Ciências Biológicas da FOB-USP, nós utilizamos como modelo de hipertensão arterial os ratos 1-rim-1clip (1R1C).


Qual a vantagem? O modelo mimetiza bem a hipertensão essencial, causada pela estenose da artéria renal e perda parcial da função, o que leva a uma série de alterações na sinalização do SNAS (sistema nervoso autônomo simpático) e do sistema renina-angiotensina. O preço também compensa, uma vez que modelos geneticamente modificados ou a hipertensão obtida através de tratamento farmacológico são mais caros e não garantem que o método de indução não interfira no teste que será realizado.


Qual a desvantagem? A cirurgia para retirar um rim e colocar um clip na artéria renal pode levar alguns ratos à morte, principalmente até o pesquisador adquirir experiência e o protocolo de anestesia ser definido.


Qual é a técnica? A técnica foi desenvolvida por Goldblatt e consiste em retirar o rim direito do animal, isolar a artéria renal do rim esquerdo e inserir um clip que deixe o diâmetro da artéria em apenas 0,25mm. Os ratos desenvolvem a hipertensão em um mês e devem ser submetidos ao experimento neste prazo, pois dois meses após a cirurgia a hipertensão torna-se maligna e a maioria morre.


Vamos ver alguns passos desta cirurgia.


Anestesia:



Abertura do abdômen:



Isolamento da artéria renal:



Inserção do clip na artéria renal:

Retirada do rim direito:



Espero que ninguém tenha ficado muito impressionado com as fotos!

Até mais!

quarta-feira, 13 de maio de 2009

Pesquisa em modelos animais: Ética X Ciência?




Você vai utilizar animais na sua pesquisa? Então é bom saber quais os princípios precisam ser seguidos, e no quê o Comitê de ética em pesquisas envolvendo animais se baseia para aprovar seu projeto ou não. O grupo de Biologia Oral do mestrado 2009 apresentou um seminário sobre “Ética na pesquisa em modelos animais” na disciplina de Bioética, segue então algumas informações importantes.

Para começar a refletir sobre esta questão colocamos alguns questionamentos: O homem é superior aos animais para dispor deles como quiser? Os animais podem sofrer e para quais finalidades? Sem dúvida devemos aos animais muito do que a humanidade conquistou de desenvolvimento biomédico e tecnológico, desde os animais de carga até os animais de laboratório.


O uso de animais em experimentação teve início no século V a.C. Hipócrates relacionava órgãos de homens doentes com os de animais, com finalidades didáticas. Aristóteles fez estudos comparativos entre órgãos de homens e de animais. Galeno realizava vivissecções com objetivos experimentais, propôs a circulação do sangue.

William Harvey (séc. XVII) foi o primeiro a utilizar animais em estudos sistemáticos. Fez estudos experimentais de fisiologia da circulação sangüínea em mais de 80 espécies.

Como reação a todas estas posturas que não impunham limite ao uso de animais em pesquisas científicas, temos algumas ações:

Society for the preservation of Cruelity to animals – primeira sociedade protetora dos animais, assumida pela Rainha Vitória.

Animal Act – primeira legislação do mundo que define os cuidados com os animais laboratoriais. Prevê que devem sempre ser medida a relação custo-benefício.

3Rs – Princípios criados pelo zooligista William Russell e o microbiologista Rex Burch

Replace – sempre que possível utilizar métodos alternativos

Reduce – reduzir o número de animais utilizados com estatítica

Refine – aumentar a quantidade de informação obtida com o animal utilizado (usar mais partes do mesmo animal).


Não existe no Brasil uma lei que regulamente o uso de animais em experimentos científicos, mas temos algumas leis que são utilizadas pelos CEPs como base:

- Lei 24.645 de 10/07/1934 – A lei é direcionada a animais de grande porte e ressalva cirurgias ou uso de órgãos quando do interesse da ciência. Exige morte rápida aos animais sofrendo.

- Lei de Contravenções Penais 1941 – sofre pena quem maltrata os animais, expõe a trabalho excessivo, abandona ou realiza experiência dolorosa ou cruel com animais, mesmo para fins didáticos ou científicos.

- Lei 6.638 de 08/05/1979 – Normas para prática Didático-Científica da Vivissecção de Animais – apenas estabelecimentos de 3ºgrau podem praticar atividades didáticas com animais, pesquisas não devem causar sofrimento aos animais.

- Lei 9.605/98 art.32 – Lei de Crimes ambientais – detenção por 3 meses a 1 ano e multa para quem realiza experiência dolorosa ou cruel em animal vivo, ainda que para fins didáticos ou científicos quando existirem recursos alternativos.

- Princípios éticos para experimentação em animais COBEA (Colégio brasileiro de Experimentação em Animais) 1992 – o animal é dotado de memória e sensibilidade, o experimentador é responsável por seus atos e escolhas, define alguns critérios para a pesquisa.


Em 1996, diante da publicação da RDC 196/96, os integrantes do COBEA e outros participantes deste movimento tentaram aprovar uma RDC que guiasse o uso de animais em experiências científicas, mas sem sucesso. Eles publicaram então algumas regras a serem seguidas nas pesquisas. Ser ético, neste caso, também significa produzir boa ciência:

1- Que a hipótese a ser testada seja útil: revisão criteriosa da literatura.

2- Que haja necessidade do uso de animais: experimentos alternativos, como simulações em computador, cultura de células, testes in vitro, modelos de animais para aulas.

3- Que seja possível transferir os resultados de uma espécie para a outra: nós somos 90% idênticos geneticamente aos ratos, por isso usamos esta transferência. Mas não podemos esquecer de casos como do AAS, que demonstram que há diferenças.

4- Que seja um método apropriado para testar a hipótese: parece absurdo, mas acontece. Um bom planejamento evita que o erro seja visto no final.

5- Que o estresse, a dor ou o sofrimento estejam relacionados com a importância da hipótese: apenas causar estresse ou dor quando estritamente necessário. Neste caso pode-se considerar um sacrifício para um bem maior.

6- Que o número de animais seja minimizado: muitas pesquisas com animais não fazem um cálculo da amostra antes de iniciar a pesquisa. Caso a amostra usada seja maior que o necessário, foi um desperdício de vidas, caso seja menor, o desperdício também ocorre porque os dados não poderão ser usados.

Por que utilizamos animais em pesquisa?

As principais vantagens de se utilizar animais, principalmente os de pequeno porte são as características de reprodutibilidade, fácil manuseio, reprodução em larga escala, docilidade, padronização, possível extrapolação de dados. De todas, a reprodutibilidade é a principal, que faz com que o número necessário de animais para provar uma hipótese seja muito menor do que o número de humanos, comparativamente.


Fatores que influenciam a experimentação:

1- Genótipo – sempre temos que identificar como foi obtida a linhagem utilizada (heterogamético ou isogênico). Diferenças genéticas entre animais resultam em maior variabilidade de resultado.

2- Fatores microbiológicos – biotérios sem barreiras sanitizante gera animais com diferentes patógenos, isto resulta em variação na condição de saúde e suscetibilidade a doenças.

3- Fatores macrobiológicos – ruídos, cheiros de diferentes cuidadores ou de outras espécies são potenciais geradores de estresse para o animal.

4- Fatores físicos – temperatura, fotoperíodo, umidade, entre outros fatores, devem ser padronizados para o conforto do animal e comparação das espécies entre diferentes instituições.

5- Fatores químicos – alguns fatores químicos podem influenciar nos animais. Um exemplo é a resina da maravalha de peroba que causa necrose hepática em algumas espécies de ratos. Esta maravalha deixou de ser usada em biotérios, após esta descoberta, utilizam outras madeiras inócuas.


O link relacionado abaixo mostra um vídeo feito na universidade de Utah, Estados Unidos, que ilustra bem simplesmente uma forma de simulação dos experimentos em animais pelo computador. É bem interessante para quem quiser lembrar os mecanismos das substâncias entorpecentes.

http://learn.genetics.utah.edu/content/addiction/drugs/mouse.html

segunda-feira, 11 de maio de 2009

Disciplina de anestésicos locais em junho

Olá, pessoal,

A Vera, secretária do Dep. Ciências Biológicas divulgou na semana passada a disciplina de Anestésicos locais e membranas excitáveis que será ministrada pelo Prof. Dr. Flávio A. C. Faria.
A disciplina será de 2 créditos e ocorrerá no período de 01/06/2009 a 29/06/2009, às segundas e sextas-feiras das 08h às 12h.
As matrículas não estão disponíveis no fênixweb, então quem estiver interessado entre em contato com a Vera, pelo e-mail veraro@usp.br

Camila Fleury

terça-feira, 5 de maio de 2009

BioBlog

Oi Gente!!!

Esse blog foi criado através da disciplina de Multimeios, Ensino e Pesquisa do Mestrado 2009 da Faculdade de Odontologia de Bauru. Fazemos parte da turma de Biologia Oral e objetivamos criar um canal de comunicação entre os alunos e departamento desta faculdade.
Traremos informações e compromissos a respeito do mestrado 2009.

Sejam todos bem vindos!!